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牛细小病毒(BPV)核酸扩增检测试剂盒说明书

发布时间:2023/3/10      点击次数:782

【产品名称】

通用名称:牛细小病毒(BPV)核酸扩增检测试剂盒(荧光-PCR) 

Name  Bovine Parvovirus Detection Kit (Real-Time PCR Method)

 

【包装规格】48T/

                                                                   

【预期用途】

牛细小病毒病是由牛细小病毒感染引起的一种接触性传染病。该病主要临床特征是母牛生殖机能障碍和犊牛呼吸道、消化道疾病。该病毒主要经口和空气等途径传递。

本试剂盒适用于检测腹泻粪便、肠系膜淋巴结、肝脏、肾、肺、肝、脑、睾丸、胎盘和淋巴结、全血等样本中的牛细小病毒,用于牛细小病毒感染的辅助诊断。

 

【检验原理】

本试剂盒根据牛细小病毒基因组设计特异性引物和探针[1-2],用荧光PCR技术对牛细小病毒的核酸进行体外扩增检测,用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。

 

【试剂组成】

     

       

核酸提取液

          1.5mL×2

酶液

       50μL×1

BPV反应液

      1.0mL×1

BPV阳性质控品

      50μL×1

阴性质控品

     250μL×1

说明:不同批号的试剂盒组分不可交互使用。

 

【储存条件及有效期】

-20℃±5℃,避光保存、运输、反复冻融次数不超过5次,有效期12个月。

 

适用仪器

ABI 、安捷伦MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、eppendorf等系列荧光定量PCR检测仪。

 

【标本采集】

疑似感染仔牛取肠系膜淋巴结或肝脏;流产或死胎的肾、肺、肝、脑、睾丸和胎盘肺、淋巴结等组织;待检活牛,用注射器取血5mL

 

【保存和运输】

上述标本短期内可保存于-20℃,长期保存可置-70℃,但不能超过6个月,标本运送应采用2~8℃冰袋运输,严禁反复冻融。

 【使用方法】

1. 样品处理(样本处理区)

1.1 样本前处理

组织、粪便样品:取样品约1g,于研磨器中研磨,加入1.5mL生理盐水后继续研磨,待匀浆后转至1.5mL灭菌离心管中,8000rpm离心2min,取上清液100μL于1.5mL灭菌离心管中;全血样本:待血凝固后,取血清100μL于灭菌离心管中。1.2 DNA提取

1) 对上述处理好的标本加入50μL核酸提取液,100℃恒温处理10min,13,000 rpm离心5min,取上清液转移至新的1.5mL EP管,-20℃保存

2) DNA的提取也可以采用优利科(上海)生命科学有限公司生产的DNA提取试剂盒(离心柱提取法),请严格按照试剂盒说明书进行操作。

2. 试剂配制(试剂准备区)

根据待检测样本总数,设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照;样品每满7份,多配制1份),每测试反应体系配制如下表:

试剂

BPV反应液

酶液

用量(样本数为N

20μL

1μL

 

3.加样(样本处理区)

将步骤1提取的DNA、阳性质控品、阴性质控品各取4μL,分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀,短暂离心。

4. PCR扩增(核酸扩增区)

4.1 将待检测反应管置于荧光定量PCR仪反应槽内;

4.2 设置好通道、样品信息,反应体系设置为25μL;

荧光通道选择: 检测通道(Reporter Dye)FAM, 淬灭通道(Quencher Dye)NONE,请勿选择ROX参比荧光。

4.3 推荐循环参数设置:

步骤

循环数

温度

时间

收集荧光信号

1

1 cycle

95℃

10min

2

40 cycles

94℃

15sec

55℃

30sec

 

结果分析判定

5.1 结果分析条件设定

设置Baseline和Threshold:一般直接按机器自动分析的结果分析,当曲线出现整体倾斜时,根据分析后图像调节Baseline的start值(一般可在3~15范围内调节)、stop值(一般可在5~20范围内调节),以及Threshold的Value值(上下拖动阈值线至高于阴性对照),重新分析结果。

 

5.2 结果判断

阳性:检测通道Ct值≤35,且曲线有明显的指数增长曲线;

可疑:检测通道35<Ct值≤38,建议重复检测,如果检测通道仍为35<Ct值≤38,且曲线有明显的增长曲线,判定为阳性,否则为阴性;

阴性:样本检测结果Ct值>38或无Ct值。

 

6. 质控标准

阴性质控品:Ct>38或无Ct值显示;

阳性质控品:扩增曲线有明显指数生长期,且Ct值≤32;

以上条件应同时满足,否则实验视为无效。

 

7. 检测方法的局限性

Ø 样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关;

Ø 样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果;

Ø 阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果;

Ø 病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果;

Ø 不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果;

Ø 试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果;

Ø 本检测结果仅供参考,如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。

 

 

注意事项

Ø 所有操作严格按照说明书进行;

Ø 试剂盒内各种组分使用前应自然融化,wan混匀并短暂离心;

Ø 反应液应避光保存;

Ø 反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;

Ø 使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;

Ø 样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;

Ø 实验完毕后用10%次氯酸或75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;

Ø 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

 

【参考文献】

[1] 罗济冠. 牛细小病毒检测试剂的制备及快速检测方法的建立[J]. 东北农业大学, 2012.

[2] 郑从义, 郭佳, 李勇. CN101565759A 一种检测牛细小病毒的荧光定量PCR试剂盒及应用. 中华人民共和国专li.


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